Réseau de phénotypage du petit animal (RPPA)

Hébergement, création et exploration fonctionnelle de modèles animaux expérimentaux.

Site de la plateforme

Réseau de phénotypage du petit animal (RPPA)

Hébergement, création et exploration fonctionnelle de modèles animaux expérimentaux.

Site de la plateforme

Réseau de phénotypage du petit animal (RPPA)

Le RPPA regroupe l’ensemble des établissements d'élevage et d'expérimentation animale ainsi que les plateaux techniques dédiés aux recherches sur le petit animal de Sorbonne Université et de l’Inserm. Il a pour objectif principal de mutualiser les compétences des animaleries et des plateaux techniques et de favoriser les échanges et les collaborations entre les sites.

Les animaleries de niveau de confinement A1 à A3 et les plateaux techniques d'exploration fonctionnelle du petit animal, répartis sur 8 sites, accueillent différents équipements et toute l'expertise nécessaire pour répondre aux enjeux scientifiques dans le domaine de la santé. Le RPPA intervient dans le strict respect de l’éthique animale, des règles d'hygiène et de sécurité.

Le RPPA favorise la formation des personnels et des utilisateurs de ses différentes plateformes en proposant des formations en interne et des journées d’échange scientifique. Il promeut également l’excellence et l’innovation en répondant à des appels d’offres pour l'acquisition de nouveaux équipements. Ses services sont payants et accessibles aux laboratoires académiques et privés.

Expertises et services

Phénotypage du petit animal (UMS28) - sites Pitié-Salpêtrière et Tenon :

Hébergement et élevage de rongeurs en confinement A1, A2, A3 et quarantaine,
Production de modèles rongeurs et expérimentation,
Transfert d’embryons : cryopréservation par congélation de sperme ou d’embryons, reviviscence par fécondation in vitro ou décongélation d’embryons, redérivation par transfert d’embryons,
Imagerie in vivo : échographie Doppler, imagerie par bioluminescence ou fluorescence (IVIS Spectrum), imagerie biphotonique en confinement A2, imagerie moléculaire par tomographie par émissions de positons (TEP),
Mise à disposition de modèles de cardiopathies induites (insuffisance cardiaque, hypertrophie) et de cardiopathies constitutionnelles, de modèles vasculaires (resténose/angioplastie) et d'hypertension pulmonaire,
Evaluation de la fonction musculaire sur animal entier et muscle isolé in situ, in vitro, ex vivo,
Radiochimie et radiomarquage automatisé ou manuel de composés (peptides, liposomes, nanoparticules), biodistribution et pharmacocinétique,
Evaluation quantitative de la progression de maladies et de réponses thérapeutiques.

Phénotypage du petit animal (UMS28) - site Charles Foix - Institut de la longévité :

Hébergement, élevage et production de rongeurs EOPS en confinement A1,
Evaluation comportementale pour la caractérisation des capacités cognitives (attention, mémoire, fonctions exécutives…), des troubles moteurs majeurs et de la motricité fine, de l’anxiété et de la dépression.

Centre de recherche des Cordeliers (CRC) :

Hébergement, élevage et production de rongeurs (EOPS et A1),
Hébergement et expérimentation en confinement A1 et A2,
Transfert d’embryons : cryopréservation par congélation de sperme et redérivation par transfert d’embryons à partir d’animaux vivants,
Evaluation de la pression artérielle sur animal vigile,
Télémétrie sur animal vigile,
Imagerie par bioluminescence et fluorescence (IVIS Lumina II) en confinement A2,
Imagerie paramétrique, imagerie de contraste ultrasonore et élastographie,
Exploration métabolique et calorimétrique, étude du comportement alimentaire,
Analyse de la composition corporelle (masse maigre et grasse), de l’effort, de l’endurance et de l’entraînement avec des exercices chroniques et des courses en descente,
Mise à disposition de modèles de cancérologie, immunologie, et de modèles rénaux,
Ophtalmologie : électrorétinographie et angiographie.

Institut du fer à moulin (IFM) :

Hébergement, élevage et production de rongeurs EOPS en confinement A1 et A2,
Evaluation comportementale pour la caractérisation de neuropathologies, des capacités cognitives (attention, mémoire, fonctions exécutives), des troubles moteurs majeurs et de la motricité fine, de l’anxiété et de la dépression,
Transfert de gènes ou de sondes optogénétiques par injection stéréotaxique de vecteurs viraux (lentivirus, AAV, Sindbis) en confinement A2,
Transfert de gènes chez l’embryon par électroporation in utero.

Institut de la vision :

Hébergement, élevage et production de rongeurs en confinement A1 et A2,
Hébergement, élevage et production de poissons zèbres (zebrafish),
Caractérisation de modèles de pathologies oculaires et évaluation de l'efficacité de nouveaux traitements thérapeutiques,
Caractérisation phénotypique de la rétine par des tests comportementaux (optocinétique) et des enregistrements électrorétinogrammes,
Imagerie in vivo de la rétine et de l'½il,
Mesure de la pression intraoculaire,
Evaluation thérapeutique d'injections médicamenteuses,
Exploration et validation de concepts et évaluation préclinique de nouvelles stratégies de traitement dans le domaine des thérapies géniques, cellulaires et médicamenteuses.

Institut de biologie Paris-Seine (IBPS) :

Hébergement, élevage et production de rongeurs EOPS en confinement A1 et A2,
Exploration comportementale : apprentissage et mémoire, reconnaissance d’objets, fonctions motrices, anxiété, dépression et défaite sociale,
Exploration fonctionnelle par bioluminescence et fluorescence in vivo sur l’animal entier,
Transfert de gènes ou de sondes optogénétiques par injection stéréotaxique à l’aide de vecteurs viraux (lentivirus, AAV, Sindbis),
Hébergement et élevage de modèles aquatiques : Danio rerio (poisson zèbre), Danionella translucida (poisson Danionella), Nothobranchius furzeri (poisson killifish), Xenopus laevis (amphibien) et Xenopus tropicalis (amphibien),
Expérimentation sur modèles aquatiques avec possibilité de mise en quarantaine,
Réalisation d’expériences de transgénèse chez le xénope,
Ingénierie des génomes avec la technologie CRISPR-Cas9 chez le poisson zèbre.

Centre de recherche Saint-Antoine (CRSA) :

Hébergement, élevage et production de rongeurs EOPS en confinement A1 et A2,
Exploration métabolique, étude du comportement alimentaire et analyse de la composition en masse grasse et masse maigre,
Exploration comportementale pour la caractérisation des capacités cognitives,
Exploration in situ.

Animalerie de l’hôpital Tenon :

Hébergement, élevage et production de rongeurs en confinement A1 et A2,
Etude de l'hémodynamique rénale,
Etude de l'hémodynamique vasculaire : mesure de la pression systémique, analyse de la réactivité vasculaire et production de modèles animaux d'ischémie.

Moyens et équipements

Phénotypage du petit animal (UMS28) - sites Pitié-Salpêtrière et Tenon :

Animalerie de rongeurs d’une capacité de 2200 cages avec une zone de quarantaine et un laboratoire de confinement de niveau A3 (Animalerie NAC),
Animalerie d’une capacité de 3000 cages en confinement A1, A2 et A3 (Animalerie 105B),
Irradiateur pour rongeurs,
Plateforme de transfert d’embryons avec cryo-tanks de stockage en azote liquide,
Plateforme d’expérimentation cœur, muscles et vaisseaux : échographe Doppler et appareil de télémétrie,
Plateforme d’imagerie par bioluminescence et fluorescence : IVIS Spectrum et microscope multiphotons Zeiss en confinement A2,
Plateforme d’évaluation de la fonction musculaire : rotarod, actimètre, cages à roue, tapis de locomotion catwalk, test d'agrippement et tapis roulants motorisés,
Laboratoire d’imagerie moléculaire positonique : nanoScan PET/CT 82S Mediso et compteur Packard.

Phénotypage du petit animal (UMS28) - site Charles Foix - Institut de la longévité :

Animalerie de rongeurs EOPS d’une capacité de 5000 cages,
Plateau technique d’étude comportementale.

Centre de recherche des Cordeliers (CRC) :

Animalerie de rongeurs d’une capacité de 3300 cages (3000 pour souris et 300 pour rats),
Centre d’explorations fonctionnelles : laboratoire L2/A2, laboratoires de chirurgie, immunologie, cancérologie, fonction rénale et physiologie dentaire, postes à anesthésie (isoflurane), table de perfusion et armoire à CO₂,
Plateau de transgénèse, cryopréservation et redérivation,
Plateau d’imagerie paramétrique (LIP), imagerie de contraste ultrasonore et élastographie (2 échographes précliniques basse fréquence) et imagerie par bioluminescence et fluorescence (IVIS Lumina II en confinement A2),
Plateau d’exploration métabolique : 100 cages métaboliques (50 pour souris et 50 pour rats), 20 cages calorimétriques (8 avec roues et 7 avec tapis roulants calorimétriques pour souris), 2 analyseurs Bruker NF50 (souris), équipement pour évaluation de la pression artérielle à la queue (souris et rats) et appareil de télémétrie,
Plateau technique d’ophtalmologie : électrorétinographe, microscope opératoire et angiographe, lampe à fente, laser argon, équipement d’optoacoustique et Micron III.

Institut du fer à moulin (IFM) :

Animalerie de rongeurs EOPS d’une capacité de 1835 cages en confinement A2,
Plateau technique d’étude comportementale : test open field et plancher infrarouge, labyrinthes en O et Y Imetronic, labyrinthe en X surélevé, rotarod, tests d'agrippement, de nage forcée et d’interaction sociale, système de vidéotracking, couloirs circulaires et boites de conditionnement opérant Imetronic, logiciel d'acquisition et d’analyse Clever System,
Système de microdialyse Phymep,
Equipements d’optogénétique,
Plateau de chirurgie stéréotaxique et d’électroporation in utero : stéréomicroscope, nanoinjecteur, micromanipulateur et électroporateur.

Institut de la vision :

Animalerie de rongeurs d’une capacité de 2200 cages en confinement A1 et A2,
Plateforme d’ophtalmologie préclinique : appareil de mesure de l’activité électrique de la rétine (ERG), microscope Micron IV, appareil d’ophtalmoscopie à balayage laser (SLO), lampe à fente, systèmes de tomographie par cohérence optique (OCT) et tomographie rétinienne (HRT), équipement d’optocinétique et Jet Ball, caissons à hypoxie et hyperoxie intermittente, laser ophtalmologique, microscope opératoire ophtalmologique, postes d’anesthésie gazeuse et système d'injection de virus pour thérapie génique en A2.

Institut de biologie Paris-Seine (IBPS) :

Animalerie de rongeurs EOPS d’une capacité de 4500 cages en A1 et 200 cages en A2,
Plateforme d’expérimentation sur rongeurs : microscopes à lumière froide KAPS MA T005 et T007, appareils stéréotaxiques et microscopes à lumière froide, modules d’anesthésie gazeuse, concentrateurs d’oxygène, PhotonImager Optima, labyrinthe de Barnes, piscine de Morris (water maze), labyrinthes en X, Y et O surélevés, tests open field, de suspension et nage forcée, rotarod, actimètre et boites de conditionnement opérant,
Plateforme d’hébergement de modèles aquatiques : 1700 aquariums poisson zèbre de 1L, 3L et 8L, dont 60 aquariums de 3L en système inversé jour/nuit, 72 aquariums pour Xenopus laevis de 27L avec possibilité de mise en quarantaine, 48 aquariums pour Xenopus tropicalis de 3L et 9L, 8 aquariums pour ascidies de 37,5L,
Plateau d’expérimentation sur modèles aquatiques : postes d’injection pour poisson zèbre et xénope, stéréomicroscopes avec lumière transmise ou fibre lumineuse, micromanipulateurs et microinjecteurs, stéréomicroscopes à fluorescence et cryo-tanks de conservation.

Centre de recherche Saint-Antoine (CRSA) :

Animalerie de rongeurs EOPS d’une capacité de 1200 cages en confinement A1 et A2,
Plateau technique d’exploration métabolique : cages métaboliques simples ou pour l’étude du comportement alimentaire, EchoMRI, armoires de cycle inversé et thermorégulé,
Plateforme technique d'exploration comportementale : labyrinthe de Barnes, piscine de Morris (water maze), labyrinthes en X, O et Y, test open field, système de vidéotracking, système d’actimétrie, rotarod,
Plateau technique d’exploration in situ : appareils d’anesthésie gazeuse, système de stéréotaxie et stéréomicroscopes.

Animalerie de l’hôpital Tenon :

Animalerie de rongeurs d’une capacité de 900 cages avec une pièce de confinement A2,
Cages métaboliques,
Plateforme d'explorations physiologiques rénales : amplificateur de pression, débitmètre à ultrasons, sondes Transonic et loupe binoculaire,
Microscope intravital.

<hr>Système multimodal de tomographie par émission de positons (TEP) et de tomodensitométrie (TDM) à l'UMS28.

Comment soumettre un projet ?

Pour soumettre un projet au RPPA, vous pouvez envoyer un mail à l’adresse medecine-RPPA@sorbonne-universite.fr, en décrivant brièvement votre projet et le type d'équipements que vous souhaitez utiliser. Votre demande sera transmise à la plateforme la plus à même de répondre à vos besoins. L'équipe concernée vous recontactera pour étudier avec vous la faisabilité du projet et la nature des services que la plateforme peut vous offrir.