IMAG’IC
Un ensemble de 15 systèmes d'acquisition pour l’imagerie cellulaire : plein champ, confocale, super-résolution, multi-photon, spectrale, intra-vitale, SHG, FLIM, TIRF et imagerie en flux.
IMAG’IC
Un ensemble de 15 systèmes d'acquisition pour l’imagerie cellulaire : plein champ, confocale, super-résolution, multi-photon, spectrale, intra-vitale, SHG, FLIM, TIRF et imagerie en flux.
IMAG’IC
La plateforme d’imagerie cellulaire IMAG’IC de l’Institut Cochin est une composante de l’infrastructure nationale France BioImaging. Répartie sur 130 m² en plein cœur de Paris, elle compte 15 systèmes d'acquisition : plein champ, confocale, super-résolution (PALM, STORM, STED), multi-photon, spectrale, intra-vitale, SHG, FLIM, TIRF, FRET-FLIM, imagerie en flux... Elle est également équipée de 3 stations d'analyse et de traitement d'images.
Toute personne dépendant d'un laboratoire public ou privé peut bénéficier d'une assistance ou d'une formation pour devenir autonome sur les microscopes de la plateforme. IMAG’IC propose également des prestations de restauration d’images par déconvolution 3D, une base de données (Cochin Image Database), de l’impression 3D, des coupes épaisses de tissus par vibratome et de la clarification de tissus.
Expertises et services
- Mise à disposition de l’ensemble des systèmes d’acquisition après formation,
- Clarification de tissus et d'organes,
- Imagerie intra-vitale (anesthésie, chirurgie, contraste SHG) sur modèles murins, poissons, ovo,
- Microscopie de super-résolution : PALM, STORM et STED,
- Imagerie en environnement confiné de niveau 2 et 3 pour l’étude d’interactions hôte-pathogène, de cellules et tissus humains ou murins infectés,
- Analyse, traitement et quantification d’images, création de macros ImageJ (Imaris, Huygens et Matlab),
- Sauvegarde et archivage d’images, archivage collaboratif, annotation et visualisation d’images pyramidales, restauration d'images par déconvolution 3D en ligne (Cochin Image Database).
Moyens et équipements
Imagerie en flux :
- ImageStreamX.
Microscopie de super-résolution :
- Leica GSD STORM PALM sptPALM TIRF,
- Leica STED FLIM FALCON confinement L2.
Microscopie confocale :
- Leica spinning-disk X1 confinement L1,
- Olympus IXplore spinning-disk W1 confinement L1,
- Leica spinning-disk X1 confinement L2,
- Leica spinning-disk X1 confinement L3,
- Leica multi-photon SP8 DIVE spectrale FALCON FLIM SHG confinement L2,
- Leica multi-photon SP5 FRET SHG confinement L1.
Microscopie plein champ :
- Microscopes TILL Photonics iMIC, TIRF, FRAP, PA-GFP,
- Leica DMI6000,
- Zeiss Observer Z1 FRET Ca2+,
- Zeiss AxioVert 200M FRET,
- Olympus BX63F.
Autres équipements :
- Macroscope et loupe Nikon,
- Imprimante 3D Polyjet,
- Base de données images Cochin Image Database.
Comment soumettre un projet ?
Pour soumettre un projet ou une demande à IMAG’IC, envoyez un mail à l’adresse générique u1016-imagic@inserm.fr. L’équipe de la plateforme vous recontactera rapidement pour vous préciser la suite des opérations.
Contact
IMAG’IC
Institut Cochin
22 rue Méchain
75014 Paris
Région : Île-de-France+33 (0)1 40 51 65 84
u1016-imagic@inserm.fr
Site de la plateforme
THÉMATIQUES : Imagerie cellulaire, Imagerie in vivo, radiobiologie
RESPONSABLES SCIENTIFIQUES :
Florence Niedergang
RESPONSABLES TECHNIQUES :
Pierre Bourdoncle
TUTELLES : CNRS, Inserm, Université Paris Cité
INFRASTRUCTURES NATIONALES : France BioImaging
LABELLISATION IBiSA : 2008
MOTS CLÉS : Microscopes plein champ, Microscopes confocaux, Spinning-disk, Super-résolution, PALM, STORM, STED, Multi-photon, FLIM, TIRF, Imagerie en flux, Microenvironnement tumoral, Tissus humains, Dynamique cellulaire, Déconvolution 3D, Base de données, Impression 3D
Fiche mise à jour en 2021