Bioimaging center Lille (BICeL)
Une expertise en microscopie électronique, photonique, en cytométrie et imagerie en flux pour les études fonctionnelles dynamiques, de la molécule jusqu'au petit animal.
Bioimaging center Lille (BICeL)
Une expertise en microscopie électronique, photonique, en cytométrie et imagerie en flux pour les études fonctionnelles dynamiques, de la molécule jusqu'au petit animal.
Bioimaging center Lille (BICeL)
Le BICeL fédère les plateformes d’imagerie des campus hospitalo-universitaire, de la cité scientifique et de l’Institut Pasteur de Lille. Il est structuré en trois plateaux technologiques : microscopie électronique, microscopie photonique, cytométrie et imagerie en flux. Le BICeL est une composante des Plateformes lilloises en biologie santé (PLBS).
Le BICeL implique au total 15 chercheurs, ingénieurs et techniciens. Il est animé par un comité de pilotage qui s’appuie sur un conseil scientifique et un comité de gestion pour mettre en œuvre la politique d’orientation stratégique, validée par le comité institutionnel et définie par le comité des utilisateurs.
L’objectif du BICeL est de soutenir l’effort de recherche de la communauté nationale et internationale, avec une excellence dans le développement de technologies pertinentes au service de problématiques scientifiques de grande visibilité. Il fait partie de réseaux technologiques nationaux et internationaux. Le BICeL offre par ailleurs de nombreuses formations et dispose d’un parc d’instruments ouverts aux académiques et industriels.
Expertises et services
- Imagerie photonique, incluant l’imagerie in vivo en animalerie A2, la super-résolution, les méthodologies FRAP, FRET, FCS/FCCS et feuille de lumière,
- Imagerie électronique à transmission (MET) et balayage (MEB), incluant la cryo-observation et tomographie en MET ou MEB et l'analyse élémentaire en EDX et en EELS en MET,
- Cytométrie conventionnelle et spectrale, et imagerie en flux, y compris en milieu de confinement,
- Tri cellulaire multifluorescent et sur évènements rares,
- Animation de formations théoriques et pratiques,
- Aide au design, à l’acquisition et à l'analyse de données,
- Sauvegarde et archivage de données.
Moyens et équipements
Microscopie électronique :
- 3 ultramicrotomes dont 2 équipés pour des cryo-coupes,
- Appareil de cryo-fixation sous haute pression,
- 2 appareils de cryo-substitution,
- MET 80-120 kV,
- MET 200 kV LaB6 avec Tomo, Cryo, STEM, EDX, EELS, GIF, caméra Ultrascan 4K,
- MEB avec cryo-station et SBF 3View (serial block face).
Microscopie photonique :
- 5 microscopes confocaux, dont 2 Airyscan, 2 spinning disk et un équipé en SR,
- 2 microscopes PALM, dont un avec module TIRF,
- Microscope PALM-SIM,
- 2 microscopes multiphotons, dont un pour l’imagerie intravitale,
- Microscope équipé en microscopie CARS,
- 3 systèmes de mesure de durée de vie de fluorescence (modulation de phase, TCSPS et SLIM),
- 4 vidéomicroscopes, dont un avec module TIRF,
- 2 microscopes pour l’observation de coupes histologiques,
- Scanner de lames,
- 8 microscopes à épifluorescence classique,
- Microscope à feuille de lumière,
- Système d’imagerie du petit animal (rongeur),
- Système d’analyse Incucyte,
- 3 loupes binoculaires,
- 6 stations de travail off-line.
Cytométrie et imagerie en flux :
- Imageur en flux ImageStream X Mark II,
- 3 trieurs : BD FACS Aria III, BD FACS Aria II SORP et Sony SH800,
- 4 analyseurs : BD LSR Fortessa, BD LSR Fortessa X-20, Beckman Cytoflex LX et BD Canto II,
- Analyseur accoustique Life Technologies Attune NxT,
- Analyseur spectral Sony SP6800,
- 4 stations de travail off-line.
Comment soumettre un projet ?
Après une formation théorique et pratique, les utilisateurs acquièrent un droit de réservation sur chaque système selon la politique tarifaire affichée et déclarée au bulletin officiel du CNRS. En contactant la plateforme à l’adresse bicel-contact@univ-lille.fr, il est possible d’obtenir au préalable des devis pour prévoir des demandes de financement. Des entretiens avec des industriels peuvent être organisés en vue d’une collaboration ou d'une prestation de service. Suivant la technologie sollicitée, une priorisation peut être mise en œuvre (premier arrivé, premier servi), de même en fonction des exigences (révision d’articles).
Exemple d'utilisation
Trafic membranaire de M. tuberculosis et régulation du cytosquelette d’actine
L’entrée des mycobactéries dans les cellules épithéliales dépend d’un récepteur membranaire, M3R, et nécessite la régulation du réarrangement du cytosquelette d’actine, démontrant l’implication de la protéine ArfGAP1 dans le contrôle des interactions hôte-pathogène.
La plateforme BiCeL a étudié la localisation d’ArfGAP1 et la dynamique fonctionnelle de recrutement de la protéine par microscopie biphotonique. Elle a également analysé certaines propriétés biophysiques par microscopie à force atomique, notamment l’élasticité cellulaire en fonction de l’expression ou non d’ArfGAP1. Cette étude a impliqué des chercheurs de Lille, Paris, Angers et Corée du Sud.
Pour en savoir plus : Song O.R. et al. (2018). ArfGAP1 restricts Mycobacterium tuberculosis entry by controlling the actin cytoskeleton. EMBO Reports, 19(1):29-42.
Contact
Bioimaging center Lille (BICeL)
1 rue du Pr Calmette
59019 Lille
Région : Hauts-de-France
+33 (0)3 20 87 11 36
bicel-contact@univ-lille.fr
Site de la plateforme
THÉMATIQUES : Imagerie cellulaire, Imagerie in vivo, radiobiologie
RESPONSABLES SCIENTIFIQUES :
Frank Lafont
TUTELLES : CHU de Lille, CNRS, Inserm, Institut Pasteur, Université de Lille
INFRASTRUCTURES NATIONALES : ChemBioFrance
LABELLISATION IBiSA : 2010
MOTS CLÉS : Cancer, Infection, Immunité, Inflammation, Maladies métaboliques, Maladies neurodégénératives, Cerveau post-natal, Vectorisation, Nanomédecine, Microscopie corrélative, Spectroscopie de force, Cytométrie en flux, Cytométrie spectrale, Imagerie en flux, Cryo-tomographie, EELS/EDX, FCS/FCCS, PALM, SIM, STORM, STED, AFM, Confocal, HCS, Feuille de lumière, MEB, MET, Multiphoton, Spinning disk
Fiche mise à jour en 2022
